Заглавная страница Избранные статьи Случайная статья Познавательные статьи Новые добавления Обратная связь FAQ Написать работу КАТЕГОРИИ: ТОП 10 на сайте Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрацииТехника нижней прямой подачи мяча. Франко-прусская война (причины и последствия) Организация работы процедурного кабинета Смысловое и механическое запоминание, их место и роль в усвоении знаний Коммуникативные барьеры и пути их преодоления Обработка изделий медицинского назначения многократного применения Образцы текста публицистического стиля Четыре типа изменения баланса Задачи с ответами для Всероссийской олимпиады по праву
Мы поможем в написании ваших работ! ЗНАЕТЕ ЛИ ВЫ?
Влияние общества на человека
Приготовление дезинфицирующих растворов различной концентрации Практические работы по географии для 6 класса Организация работы процедурного кабинета Изменения в неживой природе осенью Уборка процедурного кабинета Сольфеджио. Все правила по сольфеджио Балочные системы. Определение реакций опор и моментов защемления |
Объемы крови необходимые для исследования в зависимости от задач иммунодиагностики и применяемых методовСодержание книги
Поиск на нашем сайте
Хранение биологического материала, предназначенного для Иммунодиагностического исследования
1. Кровь, предназначенная для исследования ИКК должна подвергаться обработке в максимально короткие сроки. Сохранение образца в течение 1-4- часов можно производить при комнатной температуре, желательно в темноте. При более длительном промежутке времени образец следует сохранять при температуре +4 °С. В этом случае могут происходить изменения функциональных свойств клеток, особенно нейтрофилов (охлаждение клеток приводит к их агрегации, снижению фагоцитарной активности и др. изменениям). В то же время образец крови, предназначенный для исследования иммунологического фенотипа лимфоцитов методом проточной цитометрии сохраняет свои свойства при таком режиме хранения не менее 3 – 7 суток. 2. При необходимости длительного сохранения клеточного материала образец крови или сепарированных лимфоцитов замораживают в жидком азоте с использованием специальных буферных консервирующих смесей. 3. При хранении образца крови (плазмы или сыворотки) нужно учитывать скорость катаболизма исследуемых иммуноактивных молекул. Так, период Т1/2 молекул антител классов IgG составляет 21 сутки, IgM и IgA – 5 – 7 суток. Это означает, что при хранении образца биологического материала при температуре +4 °С (а не в замороженном состоянии) получаемая информация будет характеризоваться достоверностью в течение перечисленного выше времени. Однако данный подход совершенно непригоден для исследования цитокинов, а также компонентов СК. 4. Сыворотка крови, используемая для определения концентрации иммуноактивных молекул, может длительно храниться при −18−40 °С. Однако, один и тот же образец не должен подвергаться повторному замораживанию. Кроме этого, при длительном хранении замороженных образцов сыворотки и плазмы крови следует учитывать возможность образования холодовых преципитатов и усиления испарения воды из образца, что изменяет концентрацию и/или активность исследуемых гуморальных факторов.
Получение сыворотки крови
Взятый у пациента образец крови помещают в сухую чистую пробирку для образования сгустка, т.е. свертывания крови. Этот процесс осуществляется в течение 30-60 мин при инкубации образца при комнатной температуре или при 37º С. После образования сгустка, его отделяют от стенок пробирки, обводя сухой стеклянной палочкой, центрифугируют 10 минут при 350 - 400 g (1500 об/мин) и полученную сыворотку отбирают в чистую пробирку. Сыворотку во избежание эффекта действия неоднократных замораживаний и размораживаний в случае длительного хранения разливают в несколько микропробирок и хранят при -20 °С. Методы сепарации клеток
Многие иммунодиагностические методы нуждаются в очищенной от ненужных типов клеток суспензии. Поэтому особое значение имеют методы сепарации клеток из порции периферической крови (или другого биологического материала). В принципе, все методы сепарации можно условно разделить на три большие группы в соответствии с рисунком 1.3. Эти методы часто дополняют друг друга и используются в комплексе. Комбинация методов сепарации клеток регламентируется задачами диагностической процедуры. В настоящее время разработаны модификации практически всех методик исследования клеток с использованием разных методов сепарации или вовсе без них. При проведении сепарации клеток нужно учитывать: 1) существенные потери клеток, причем не только в количестве, но и в качестве. Так, ряд функциональных состояний клеток (активация, патологические изменения) сопровождается увеличением их чувствительности к физико-химическим воздействиям, приводящим к разрушению этих клеток и выведению их из-под контроля диагностического теста, а значит – и к утрате диагностически важной информации; 2) изменения функциональных характеристики клеток в процессе сепарации, что также изменяет диагностическое значение полученных результатов. Среди методов сепарации (выделения, разделения, сортинга) клеток используются различные принципы и соответствующие им методы в соответствии с таблицей 1.3.
Рисунок 1.3. Основные методы сепарации клеток Таблица 1.3
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Последнее изменение этой страницы: 2017-02-10; просмотров: 245; Нарушение авторского права страницы; Мы поможем в написании вашей работы! infopedia.su Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Обратная связь - 216.73.216.198 (0.006 с.) |